查看gz文件 linux zcat file.gz mtx.gz

可以使用以下命令来查看 gz 压缩文件的内容： zcat file.gz 1 该命令会将 file.gz 文件解压并输出到标准输出，可以通过管道符将其与 grep 命令结合使用来查找需要的关键词，例如： zcat file.gz | grep keyword 1 该命令会将 file.gz 文件解压并输出到标准输出，然后通过管道符将其传递给 grep 命令，查找包含关键词 “keyword” 的行。

挖掘公共单细胞数据集时，会遇到常见各种单细胞测序数据格式。现总结如下，方便自己日后调用，以创建Seurat对象
（1）barcodes.tsv.gz、features.tsv.gz、matrix.mtx.gz
（2）表达矩阵
（3）h5
（4）h5ad

格式一：barcodes.tsv.gz、features.tsv.gz、matrix.mtx.gz【☆】

• 这是cellranger上游比对分析产生的3个文件，分别代表细胞标签(barcode)、基因ID(feature)、表达数据（matrix）
• 一般先使用read10X()对这三个文件进行整合，得到行为基因、列为细胞的表达矩阵（为稀疏矩阵dgCMatrix格式，节约内存）；然后再配合CreateSeuratObject()函数创建Seurat对象
• 示例数据集：GSE166635，创建代码如下----

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE166635

dir="./data/HCC2/filtered_feature_bc_matrix/"
list.files(dir)
#[1] "barcodes.tsv.gz" "features.tsv.gz" "matrix.mtx.gz" 

counts <- Read10X(data.dir = dir)
class(counts)
#[1] "dgCMatrix"
#attr(,"package")
#[1] "Matrix"

scRNA <- CreateSeuratObject(counts = counts)
scRNA
#An object of class Seurat 
#33694 features across 9112 samples within 1 assay 
#Active assay: RNA (33694 features, 0 variable features)

• 如上Read10X()函数接受的参数为目录名，该目录包含了所需的三个配套文件；值得注意的是三个文件名只能分别是barcodes.tsv.gz、features.tsv.gz、matrix.mtx.gz，然后read10X函数可以自动加载。如上截图那样就是需要修改的~

关于barcodes.tsv.gz、features.tsv.gz、matrix.mtx.gz三个文件的格式与内容

• 一般来说直接使用read10X()不会出现什么问题，但今天遇到GSE148192数据集时，出现了报错~~

dir = "./GSE148192_RAW/GSM4462451/"
list.files(dir)
#[1] "barcodes.tsv.gz" "features.tsv.gz" "matrix.mtx.gz"
counts =  Read10X(dir)
#Error in dimnamesGets(x, value) : 
#  invalid dimnames given for “dgTMatrix” object

• 所以这个GSE ID提供的数据格式可能是有点问题，接下来就通过对比GSE166635的GSM5076750(可以正常读入)与GSE148192的GSM4462451(读入失败)，探索下这三个文件的格式

（1）barcodes.tsv.gz

• GSM5076750的格式：如下看出就简单的一列，为细胞的barcode标签信息

   

• GSM4462451的格式：如下看出，区别在于多了行名，以及三列细胞注释信息

   

（2）features.tsv.gz

• GSM5076750的格式：如下可以看出均为基因的注释信息，前两列为基因ID

   

• GSM4462451的格式：如下看出，区别在于同样多了行名，以及额外两列信息

   

（3）matrix.mtx.gz

• GSM5076750的格式：如下(前三行为注释信息，其中第三行为total number genes、cells、counts)，结合上述细胞标签与基因名信息，知道了前两列分别为基因和细胞的索引，第三列为表达信息。
  利用这种方式实现了高效的储存数据(值得借鉴学习)。以第四行为例：表示barcodes.tsv.gz文件里第一个细胞的features.tsv.gz第33665个基因的counts数为22。

• GSM4462451的格式：如下看出，区别有两点：第一列为细胞索引、第二列为基因索引，并且第3列是非整型数据。

   

经过一番探索，将GSM4462451的barcodes.tsv.gz、features.tsv.gz行名删除；matrix.mtx.gz的第一列与第二列调换，第三列改为整型后，read10X()便可以顺利都成功。我认为GSM4462451这几个文件应该是作者自己制作的，吐槽一下~~。不过了解了一番这三个文件的格式也是有所收获。

格式二：直接提供表达矩阵

• 这种是最方便的，直接创建Seurat即可
• 示例数据：GSE144320

scRNA <- CreateSeuratObject(counts = counts)
scRNA

格式三：h5格式文件

• 使用Read10X_h5()函数，读入表达矩阵，在创建Seurat对象
• 示例数据：GSE138433

image.png

sce <- Read10X_h5(filename = GSM4107899_LH16.3814_raw_gene_bc_matrices_h5.h5")
sce <- CreateSeuratObject(counts = sce)

格式四：h5ad格式

• 需要安装，使用SeuratDisk包的两个函数；
• 先将后h5ad格式转换为h5seurat格式，再使用LoadH5Seurat()函数读取Seurat对象。
• 示例数据集：GSE153643

#remotes::install_github("mojaveazure/seurat-disk")
library(SeuratDisk)
Convert("GSE153643_RAW/GSM4648565_liver_raw_counts.h5ad", "h5seurat",
        overwrite = TRUE,assay = "RNA")
scRNA <- LoadH5Seurat("GSE153643_RAW/GSM4648565_liver_raw_counts.h5seurat")
#注意一下，我之前载入时，表达矩阵被转置了，需要处理一下~

---

以上是我目前了解到的针对不同数据来源，创建Seurat对象的几种方式。如遇新的方法，会继续补充~~

©著作权归作者所有,转载或内容合作请联系作者

作者：小贝学生信
链接：https://www.jianshu.com/p/5b26d7bc37b7
来源：简书
著作权归作者所有。商业转载请联系作者获得授权，非商业转载请注明出处。