海马齿状回数据集
此处用于速率分析的数据集来自齿状回，这是海马的一部分，参与学习、偶发性记忆形成和空间识别。
数据在 Hochgerner et al. (2018)，它使用10X Genomics Chromium 测量，这些数据由2，930个细胞，25，919个基因组成，形成多个谱系。
[1]:
import scvelo as scv
scv.logging.print_version()
Running scvelo 0.2.4.dev28+g688a6bd (python 3.8.0) on 2021-05-12 17:30.
[2]:
scv.settings.verbosity = 3 # show errors(0), warnings(1), info(2), hints(3)
scv.settings.presenter_view = True # set max width size for presenter view
scv.set_figure_params('scvelo') # for beautified visualization
加载和清洗数据
以下分析基于内置 齿状回数据集。
要对自己的数据进行速率分析，请将您的文件（loom, h5ad, xlsx, csv, tab, txt …）通过使用adata = scv.read('path/file.loom', cache=True)读取到AnnData 对象
如果您想将loom文件合并到已存在的 AnnData 对象中，请使用scv.utils.merge(adata, adata_loom)
[3]:
adata = scv.datasets.dentategyrus()
[4]:
# show proportions of spliced/unspliced abundances
scv.utils.show_proportions(adata)
adata
Abundance of ['spliced', 'unspliced']: [0.9 0.1]
[4]:
AnnData object with n_obs × n_vars = 2930 × 13913
obs: 'clusters', 'age(days)', 'clusters_enlarged'
uns: 'clusters_colors'
obsm: 'X_umap'
layers: 'ambiguous', 'spliced', 'unspliced'
如果您有一个非常大的数据集，您可以通过scv.utils.cleanup(adata)清除不需要的属性来保存内存。
预处理数据
必要的预处理包括：
- 通过检测（以最少计数检测）和高变异性（分散度）进行基因选择。
- -按每个细胞的初始大小和logX使每个单元格标准化。
过滤和标准化以同一静脉应用于剪切/未剪切计数，X. 对数仅应用于 X。如果 X 已经从以前的分析中预处理，则它不会动它。
所有这些都归入一个函数pp.filter_and_normalize，基本上运行如下：
scv.pp.filter_genes(adata, min_shared_counts=10)
scv.pp.normalize_per_cell(adata)
scv.pp.filter_genes_dispersion(adata, n_top_genes=3000)
scv.pp.log1p(adata)
此外，我们需要在PCA空间中最近的邻居之间计算的第一和第二顺序时刻（平均值和非中心化方差）。确定速率估计需要第一个顺序，而随机估计也需要第二个顺序时刻。
[5]:
scv.pp.filter_and_normalize(adata, min_shared_counts=30, n_top_genes=2000)
scv.pp.moments(adata, n_pcs=30, n_neighbors=30)
Filtered out 11019 genes that are detected in less than 30 counts (shared).
Normalized count data: X, spliced, unspliced.
Logarithmized X.
computing neighbors
finished (0:00:03) --> added
'distances' and 'connectivities', weighted adjacency matrices (adata.obsp)
computing moments based on connectivities
finished (0:00:00) --> added
'Ms' and 'Mu', moments of spliced/unspliced abundances (adata.layers)
计算速率和速率图
基因特异性速率通过前体（未剪切）和成熟（剪切）mRNA丰度之间的比率来获得，这很好地解释了稳定状态（恒定的转录状态），然后计算观测到的丰度如何偏离稳定状态的预期。（我们将很快发布不再依赖于稳定状态假设的版本）。
每个工具都有其绘图对应函数。例如，scv.tl.velocity的结果可以使用`scv.pl.velocity可视化。
[6]:
scv.tl.velocity(adata)
computing velocities finished (0:00:00) --> added 'velocity', velocity vectors for each individual cell (adata.layers)
这计算了潜在细胞转换与高维空间中速率矢量的相关性。由此产生的速率图具有维度n obs×n obs，并总结了通过速率矢量很好地解释的可能细胞状态变化（通过从一个细胞过渡到另一个细胞）。如果您设置approx=True，将在具有 50 个组件的缩小的 PCA 空间上计算。
然后，速率图可以通过在与速率矢量相关的细胞状态变化中分配相关性，应用高斯函数转换为过渡矩阵。您可以通过scv.tl.transition_matrix产生的过渡矩阵用于以下显示的各种应用程序。例如，它用于将速率放入低维嵌入中，只需将平均过渡应用于过渡概率，即scv.tl.velocity_embedding。此外，我们可以通过scv.tl.terminal_states沿着马尔科夫链追踪细胞的起源和潜在命运，从而在轨迹中获取根细胞和终点：
[7]:scv.tl.velocity_graph(adata)
computing velocity graph finished (0:00:05) --> added 'velocity_graph', sparse matrix with cosine correlations (adata.uns)
绘制结果图
最后，速率通过指定basis被投影到以三种可用方式之一的任何嵌入上进行可视化：
单个细胞级别、网格级别或此处所示的流线图。
[8]:scv.pl.velocity_embedding_stream(adata, basis='umap', color=['clusters', 'age(days)'])
computing velocity embedding finished (0:00:00) --> added 'velocity_umap', embedded velocity vectors (adata.obsm)
[9]:scv.pl.velocity_embedding(adata, basis='umap', arrow_length=2, arrow_size=2, dpi=150)
[10]:scv.pl.velocity_embedding_grid(adata, color='Tmsb10', layer=['velocity', 'spliced'], arrow_size=1.5)
[11]:scv.tl.rank_velocity_genes(adata, groupby='clusters')scv.DataFrame(adata.uns['rank_velocity_genes']['names']).head()
ranking velocity genes finished (0:00:01) --> added 'rank_velocity_genes', sorted scores by group ids (adata.uns) 'spearmans_score', spearmans correlation scores (adata.var)[11]:
| Astrocytes | Cajal Retzius | Cck-Tox | Endothelial | GABA | Granule immature | Granule mature | Microglia | Mossy | Neuroblast | OL | OPC | Radial Glia-like | nIPC | |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| 0 | Phkg1 | Utrn | Golga7b | Serpine2 | Stmn2 | Shisa9 | Grasp | Srgap2 | Chgb | Mt3 | Clmn | Tnr | 2810459M11Rik | Bzw2 |
| 1 | Ctnnd2 | Scg3 | Irf9 | Arhgap31 | Vsnl1 | Jph1 | 2010300C02Rik | Clic4 | Pgm2l1 | Gdpd1 | Gprc5b | Hmgcs1 | Ctnnd2 | Igfbpl1 |
| 2 | Lsamp | Tmem47 | Cplx2 | Tmsb10 | Lancl1 | Sphkap | Rtn4rl1 | Qk | Fxyd1 | Slc38a2 | Arrdc3 | Luzp2 | Hepacam | Rps27l |
| 3 | Qk | Dpysl3 | Stmn2 | Igf1r | Mtus2 | Pgbd5 | Wasf1 | Ssh2 | Mapk6 | Bzw2 | Pcdh9 | Elavl3 | Ptn | Tbrg4 |
| 4 | Cspg5 | Sh3glb1 | Nfkbia | Prex2 | Elavl3 | Pip5k1b | Jph1 | Sirt2 | Osbpl6 | Epha4 | Gatm | Ppp1r14c | Lsamp | Mpzl1 |
[12]:var_names = ['Tmsb10', 'Camk2a', 'Ppp3ca', 'Igfbpl1']scv.pl.velocity(adata, var_names=var_names, colorbar=True, ncols=2)
[13]:scv.pl.velocity_graph(adata)