前言
最近做的项目要对reference genome基于突变进行一些modify，制作personalized genome或者说是psuedo-genome伪基因组。其实就是把某个测序样本call出来的SNP && indel替换掉参考基因组对应位置的碱基。
自己可以编写脚本修改，使用Perl中的substr来进行单个位点修改，把坐标按照从后往前的顺序，而不是从前到后。
其实有蛮多工具可以做这个的，在这里安利一下，大家可以使用体验一下。
GATK FastaAlternateReferenceMaker
GATK作为通用的变异检测的软件，其中有很多有用的工具，这里介绍一下FastaAlternateReferenceMaker: Create an alternative reference by combining a fasta with a vcf.
准备好检测的VCF文件，参考基因组FASTA文件，使用如下命令：
$ /gatk_software_path/gatk FastaAlternateReferenceMaker \
-R /ref_genome_path/reference-genome.fasta
-O /ref_genome_path/psuedo-genome.fa \
-L input.intervals \
-V /variant_path/input.vcf \
[--snp-mask mask.vcf]
这里的-L参数可以多单个基因或者基因组一段区域进行替换。
--snp-mask参数，当构建时psuedo-genome.fa时，该VCF文件中的SNP用作掩码（在序列中插入N）。
运行结束，个人的参考基因组就构建好了，一般制作psuedo-genome.fa就是为了消除变异带来的影响，部分其他参数可以到gatk官网查阅。另外FastaAlternateReferenceMaker使用简单的indel，当VCF文件包含复杂的位点时（complex substitutions），会忽略。
PS:
If there are multiple variants that start at a site, it chooses one of them randomly.
When there are overlapping indels (but with different start positions) only the first will be chosen.
perEditor
perEditor用于分析phased SNPs/indels，意味着VCF文件中的GT是0|1/1|1/1|2，而不是我们常见的0/1这种，明确知道变异是在母本还是父本染色体上，第一个是母本，第二个是父本，使用方式如下：
$ perEditor ref_genome.fa snps_indels.vcf allele indivicual personalized_genome.fa
$ perEditor chr1.fa variations.vcf mother 1 chr1_customized.fa
这里对参数进行一下解释：
allele两个选项mother|father，代表等位基因来自于哪一个亲本；
indivicual，整数，这个是因为有一些VCF文件中不止包含一个样本的突变信息，参数代表选择第几个样本的突变来进行创建personalized genome，1代表第一个样本；
perEditor_ra，允许用户把染色体重排信息考虑到创建个性化参考基因组中，一样只服务于phased的数据，另外还需要把涉及染色体重排的染色体放在一个目录下：
$ ls chr*fa
chr1.fa chr2.fa chr3.fa chr4.fa
$ perEditor_ra rearrangements.vcf chr_length.bed centromeres.bed individual allele
$ perEditor_ra rearrangements_t.vcf chr_length_t.bed centromeres_t.bed 1 father
这里的individual和allele参数和perEditor是一样的含义；
rearrangements_t.vcf，染色体重排注释结果，vcf format version 4.1；
chr_length_t.bed，文件中包含基因组每一条染色体的长度，即核苷酸总数，格式如下：
chr1 200
chr2 104
chr3 154
chr4 102
centromeres_t.bed，文件中包含每条染色体的着丝粒位置的文件，着丝粒坐标用于确定新染色体的身份，当两条染色体由于重排而合并时，新染色体将按照着丝粒来源的名称来命名，继承两个着丝粒，其名称则包含两个亲本染色体的名称，文件格式如下：
chr1 50 60
chr2 15 20
chr3 20 30
chr4 80 90
bed文件和vcf文件位于同一个工作目录下，最终生成的新的染色体命名中添加了new：
$ ls *new*fa
chr1_new.fa chr2_new.fa chr3_new.fa chr4_new.fa
g2gtools
g2gtools通过将SNP和indels整合到参考基因组中来创建自定义基因组，提取感兴趣的区域（例如外显子或转录本），并在两个基因组之间转换文件（bam，gtf，bed）的坐标。 与其他liftover 工具不同，g2gtools不会丢弃掉落在indel区域上的alignments。 版本0.2可以创建个人二倍体基因组。 新版本仍然将个人基因组坐标上的二倍体比对转换回参考基因组，因此我们可以比较种群样本之间的比对。
安装
$ conda config --add channels r
$ conda config --add channels bioconda
$ conda create -n g2gtools python=2 jupyter ipykernel
$ source activate g2gtools
$ conda install -c kbchoi g2gtools
Usage
先激活virtual environment：
source activate g2gtools
创建自定义的基因组，需要下列信息：
${REF} reference genome in fasta format
${STRAIN} strain name (usually a column name in the vcf file)
${VCF_INDELS} vcf file for indels
${VCF_SNPS} vcf file for snps
${GTF} gene annotation file in gtf format
下面是操作流程：
# 创建映射两个基因组之间的碱基的chain文件
g2gtools vcf2chain -f ${REF} -i ${VCF_INDELS} -s ${STRAIN} -o ${STRAIN}/REF-to-${STRAIN}.chain
# 把snp添补到ref genome上
g2gtools patch -i ${REF} -s ${STRAIN} -v ${VCF_SNPS} -o ${STRAIN}/${STRAIN}.patched.fa
# 将indels整合到snp添补后的基因组中
$ g2gtools transform -i ${STRAIN}/${STRAIN}.patched.fa -c ${STRAIN}/REF-to-${STRAIN}.chain -o ${STRAIN}/${STRAIN}.fa
# 针对新的定制基因组创建定制基因注释
$ g2gtools convert -c ${STRAIN}/REF-to-${STRAIN}.chain -i ${GTF} -f gtf -o ${STRAIN}/${STRAIN}.gtf
$ g2gtools gtf2db -i ${STRAIN}/${STRAIN}.gtf -o ${STRAIN}/${STRAIN}.gtf.db
vcf2diploid
vcf2diploid通过将phased的变异整合到参考基因组中，从vcf文件创建二倍体基因组。
Installation
git clone https://github.com/abyzovlab/vcf2diploid.git
cd vcf2diploid
make
Running
java -Xmx10g -jar vcf2diploid.jar -id sample_id -chr file1.fa file2.fa ... [-vcf file1.vcf file2.vcf ...] > logfile.txt
OPTIONS:
id - (required) the ID of individual whose genome is being constructed (e.g., NA12878). The tool recognizes by this ID in the VCF file
chr - (required) FASTA file(s) of reference sequence(s)
vcf - (required) VCF4.0 file(s) containing variants from parents and the individual
Xmx - max memory allocation for JAVA. In this example, 10GB was allocated.
logfile.txt - stores the standard output produce from the run
bcftools consensus
Usage
About: Create consensus sequence by applying VCF variants to a reference fasta
file. By default, the program will apply all ALT variants. Using the
--sample (and, optionally, --haplotype) option will apply genotype
(or haplotype) calls from FORMAT/GT. The program ignores allelic depth
information, such as INFO/AD or FORMAT/AD.
Usage: bcftools consensus [OPTIONS]
Options:
-c, --chain write a chain file for liftover
-e, --exclude exclude sites for which the expression is true (see man page for details)
-f, --fasta-ref reference sequence in fasta format
-H, --haplotype choose which allele to use from the FORMAT/GT field, note
the codes are case-insensitive:
1: first allele from GT
2: second allele
R: REF allele in het genotypes
A: ALT allele
LR,LA: longer allele and REF/ALT if equal length
SR,SA: shorter allele and REF/ALT if equal length
-i, --include select sites for which the expression is true (see man page for details)
-I, --iupac-codes output variants in the form of IUPAC ambiguity codes
-m, --mask replace regions with N
-o, --output write output to a file [standard output]
-s, --sample apply variants of the given sample
Examples:
# Get the consensus for one region. The fasta header lines are then expected
# in the form ">chr:from-to".
samtools faidx ref.fa 8:11870-11890 | bcftools consensus in.vcf.gz > out.fa
定制基因组
$ bcftools consensus \
--fasta-ref \
--iupac-codes \
--output \
--sample
# Apply variants present in sample "NA001", output IUPAC codes for hets
$ bcftools consensus -i -s NA001 -f in.fa in.vcf.gz > out.fa
# Create consensus for one region. The fasta header lines are then expected
# in the form ">chr:from-to".
$ samtools faidx ref.fa 8:11870-11890 | bcftools consensus in.vcf.gz -o out.fa
vcfutils.pl
samtools、bcftools和vcfutils.pl三个程序联合使用，从BAM文件开始操作，到获得新的参考基因组：
$ samtools mpileup -d8000 -q 20 -Q 10 -uf REFERENCE.fasta Your_File.bam | bcftools call -c | vcfutils.pl vcf2fq > OUTPUT.fastq
# d, --max-depth
# -q, -min-MQ Minimum mapping quality for an alignment to be used
# -Q, --min-BQ Minimum base quality for a base to be considered
$ sed -i -e '/^+/,/^\@/{/^+/!{/^\@/!d}}; /^+/ d; s/@/>/g' OUTPUT.fastq
References
FastaAlternateReferenceMaker
perEditor A tool to create personalized genome sequences
g2gtools creates custom genomes by incorporating SNPs and indels into reference genome
Welcome to g2gtools’ documentation
Personal Genome Constructor (vcf2diploid tool)
construct DNA sequence based on variation and human reference
—— dulunar 后记于 2019.12