NCBI数据、获取使用

一、NCBI各类数据储存库

1、Sequence Read Archive (SRA):raw sequence data and alignment information from

high throughput sequencing platforms including 454, illumina, SOLiD and PacBio.

NCBI数据、获取使用_第1张图片
此外, European Nucleotide Archive (ENA) 和 DNAnexus SRA 均有SRA数据。

2、Gene Expression Omnibus (GEO):RNA-Seq, ChIP-seq, RIP-seq, HiC-seq, methyl-seq, expression data such as microarray, SAGE or mass spectrometry data sets.

3、Database of Short Genetic Variations (dbSNP):variation data, such as single nucleotide variations, microsatellites, and small-scale insertions and deletions.

4、Database of Genomic Structural Variations (dbVar):genomic structural variation data, such as large insertions, deletions, translocations etc.

5、Database of Expressed Sequence Tags (dbEST)

6、Transcriptome Shotgun Assembly Sequence Database (TSA):transcriptome assemblies

7、Whole Genome Shotgun Submissions (WGS):incomplete genome assemblies.

二、Entrez

如何使用Entrez?NCBI提供了一个API网络接口Entrez E-utilsand 和一个命令行工具Entrez Direct。

Entrez E-utils

query URL :https://service.nih.gov?param1=value1¶m2=value2

在shell中,&需要使用转义符\,或者将URL添加引号‘’

        curl -s https://eutils.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/eutils/efetch.fcgi?  id=AF086833.2\&db=nuccore\&rettype=fasta|head  

        curl -s 'https://eutils.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/eutils/efetch.fcgi?id=AF086833.2&db=nuccore&rettype=fasta'|head

具体命令参考文档:https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK25500/

Entrez Direct

具体命令参考文档:https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK179288/

einfo

抓取描述信息,einfo -dbs 查看所有数据库类型

esearch

esearch -help 查看帮助,esearch 查找的记录可以传递给efetch下载

esearch -db .. -query ..  | efetch -formate .. 

    esearch -db sra -query PRJNA257197 | efetch -format runinfo > info.csv (runinfo — 所有搜索的信息)

efetch

It can even produce the sequence from reverse strands(reverse complement):

三、sratoolkit

1、prefetch 可以从远程站点下载文件

            prefetch --option-file ids.list

2、fast-dump : downloads data in FASTQ format, 初始sra data 保存在 ~/ncbi/public/sra/

            fastq-dump SRR1553607     --split-files(   separate paired end reads)

下载project里多个SRA数据:

        在上一步得到的info.csv文件中,第一列为这个project里所有的SRA文件,取第一列run编号,用xargs批量下载

        cat info.csv|cut-f 1 -d','|grepSRR|head>ids ; cat ids |xargs-n 1 fastq-dump -X 10000 --split-files $1

3、sra-stat 

            sra-stat --xml --quick SRR1553610 生成xml报告

四、 SeqKit

            seqkit stat *.gz  查看全部fasta/q文件的简要信息

            seqkit fx2tab --name --only-id --gc *.fna 显示GC含量

            seqkit fx2tab -H -n -i -B a -B c -B ac *.fna 显示A、C、AC含量

            随机取出0.001比例的id号,并根据id从总体中提取序列:seqkit sample --proportion 0.001 duplicated-reads.fq.gz|seqkitseq --name --only-id>id.txt ;seqkit grep --pattern-file id.txt duplicated-reads.fq.gz > duplicated-reads.subset.fq.gz

            seqkit grep --pattern-file id2.txt --invert-match viral.1.1.genomic.fna.gz > clean.fa 取出list上的序列

            seqkit grep --pattern-file id2.txt viral.1.1.genomic.fna.gz|seqkitlocate--ignore-case --only-positive-strand --pattern K+ --pattern N+ 显示含K、N的数据

            seqkit rmdup --by-seq --ignore-case duplicated-reads.fq.gz 去除重复

            seqkit locate --degenerate --ignore-case --pattern-file enzymes.fa *.fna 匹配短序列如酶结合位点

            seqkit sort--by-length/full header (--by-name) or sequence content (--by-seq)

            seqkit split --by-id --id-regexp"\[(.+)\]" 根据ID, number of parts, size of each part, or sequence region分离

            csvtk join-H -t<(seqkit fx2tab 1.fa)<(seqkit fx2tab 2.fa)|sed's/\t\t//'|seqkit tab2fx 合并两个文件

五、other tool

get subreads from a single ZMW : bamtools filter -in subreads.bam -out zmw.bam -tag 'zm..'

get the consensus sequence from the subreads : # ccs  [options]  INPUT OUTPUT

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