基因突变的研究已成为当今生命科学研究的热点之一，检测方法也随之迅速发展。人类细胞癌基因的突变类型已如上所述，对于基因突变的检测，1985 以前，利用Southern 印迹法，可以筛选出基因的缺失、插入和移码重组等突变形式。对于用该法法不能检测的突变，只能应用复杂费时的DNA 序列测定分析法。
多聚酶链反应（polymerase chain reaction,PCR）技术是突变研究中的最重大进展，使基因突变检测技术有了长足的发展，目前几乎所有的基因突变检测的分子诊断技术都是建立于PCR 的基础之上，并且由PCR 衍生出的新方法不断出现，目前已达二十余种，自动化程度也愈来愈高，分析时间大大缩短，分析结果的准确性也有 很 大 很 提 高 。 其中 包 括 单 链 构 象多态 性 （ single-strand comformationalpolymorphism,SSCP）和异源双链分析法（heteroduplex analysis,HA）。下面分别介绍几种PCR衍生技术及经典突变检测方法，可根据检测目的和实验室条件选择时参考。
PCR-SSCP 法
PCR-SSCP 法是在非这性聚丙烯酰胺凝胶上，短的单链DNA 和RNA 分子依其大街基序列不同而形成不同构象，一个碱基的改变将影响其构象而导致其在凝胶上的移动速度改变。其基本原理为单链DNA 在中性条件下会形成二级结构，这种二级结构依赖于其碱基组成，即使一个碱基的不同，也会形成不同的二级结构而出刺同的迁移率。由于该法简单快速，因而被广泛用于未知基因突变的检测。
用PCR-SSCP 法检测小于200bp 的PCR 产物时，突变检出率可达70％-95％，片段大于400bp 时，检出率仅为50％左右，该法可能会存在1％的假阳性率。应用PCR-SSCP 法应注意电泳的最佳条件，一般突变类型对检测的灵敏度无大的影响，同时该法不能测定突变的准确位点，还需通过序列分析来确定。Sarkar 等认为对于大于200bp 的片段，用其RNA 分子来做SSCP 会提高其录敏度。
应用PCR-SSCP 检测点突变已见报道于人类大部分的肿瘤组织或细胞，如乳腺癌、食管癌、肺癌、胃癌、肝癌、胰腺癌等。检测的基因包括多种癌基因及抑癌基因，也是检测抑癌基因p53 突变最常用的方法，仅检测第5-8 外显子即可发现85％以上的p53 基因突变。由于该法简便快速，特别适合大样本基因突变研究的筛选工作。
异源双链分析法（HA）
HA法直接在变性凝胶上分离杂交的突变型一野生型DNA 双链。由于突变和野生型DNA 形成的异源杂合双链DNA 在其错配处会形成一突起，在非变性凝胶中电泳时，会产生与相应的同源双DNA 不同的迁移率。该法与SSCP 相似，所不同的是SSCP 分离的是单链DNA，HA法分离的是双链DNA，也只适合于小片段的分析。但HA 对一些不能用SSCP 检出的突变有互补作用，两者结合使用，可使突变检出率提高到近100％。
突变体富集PCR 法
（mutant-enriched PCR）
本法的基本原理是利用ras 基因家族某个密码子部位存在已知的限制性内切酶位点，如K-ras 基因第12 密码子的BstNI 位点，第13 密古巴子有BgⅠⅡ位点。用链续二次的巢式 PCR 来扩增包括K-ras 第12、13 密码子的DNA 片段，在两次扩增反应之间用相应的内切酶消化扩增的DNA 片段，野生型因被酶切而不能进入第二次PCR 扩增，而突变型则能完整进入第二次PCR 扩增并得到产物的富集。
变性梯度凝胶电泳法
（denaturing gradinent electrophoresis,DGGE）
DGGE 法分析PCR 产物，如果突变发生在最先解链的DNA 区域，检出率可达100％，检测片段可达1kb，最适围为100bp-500bp。基本原理基于当双链DNA 在变性梯度凝胶中进行到与DNA 变性湿度一致的凝胶位置时，DNA发生部分解链，电泳适移率下降，当解链的DNA 链中有一个碱基改变时，会在不同的时间发生解链，因影响电泳速度变化的程度而被分离。由于本法是利用温度和梯度凝胶迁移率来检测，需要一套专用的电泳装置，合成的PCR 引物最好在5`末端加一段40bp-50bp的GC夹，以利于检测发生于高熔点区的突变。在DGGE 的基础上，又发展了用湿度梯度代替化学变性剂的TGGE法（温度梯度凝胶电泳temperature gradientgelelectrophoresis,TGGE）。DGGE 和 TGGE 均有商品化的电泳装置，该法一经建立，操作也较简便，适合于大样本的检测筛选。
化学切割错配法
（chemical cleavage ofmismatch,CCM）
CCM 为在Maxam-Gilbert测序法的基础上发展的一项检测突变的技术，其检测突变的准确性可与DNA 测序相仿。其基本原理为将待测含DNA 片段与相应的野生型DNA片段或DNA 和RNA 片段混俣变性杂交，在异源杂合的双链核酸分子中，错配的C 能被羟胺或哌啶切割，错配的T 能被四氧化饿切割，经变性凝胶电泳即可确定是否存在突变。该法检出率很高，也是检片段最长的方法，已有报功检测了1.7kb 片段，如果同时对正、反义链进行分析，检出率可达100％。应用荧光检测系统可增强敏感度，可检测到10 个细胞中的1 个突变细胞。该法中的化学试剂有毒，又发展了碳二亚胺检测法（catodiimide,CDI）,CDI 为无毒物质，也可检测大片段DNA 的点突变。
等位基因特异性寡核苷酸分析法
（allele-specific oligonucleotide,ASO）
ASO 为一种以杂交为基础对已知突变的检测技术。以PCR和ASO相结合，设计一段20bp左右的寡核苷酸片段，其中包含了发生突变的部位，以此为探针，与固定在膜上的经PCR 拉增的样品DNA杂交。可以用各种突变类型的寡核苷酸探针，同时以野生型探针为对照，如出现阳性杂交带，则表运河样品中存在与该ASO 探针相应的点突变，ASO 需严格控制杂交条件和设置标准对照避免假阳性和假阴性。目前已有商品化的检测盒检测部分癌基因ASO 突变。
DNA 芯片技术
（DNA chip）
DNA 芯片技术是90 年代后发展的一项DNA 分析新技术，它集合了集成电路计算机、激光共聚焦扫描、荧光标记探针和DNA 合成等先进技术。可用于基因定位、DNA 测序、物理图谱和遗传图谱的构建等。
在基因突变检测方面DNA芯片也有广阔的前景，其基本原理为将许多已知序列的寡核苷酸DNA排列在1块集成电路板上，彼此之间重叠1个碱基，并覆盖全部所需检测的基因，将荧光标记的正常DNA和突变DNA发别与2块DNA 芯片杂交，由于至少存在1个碱基的差异，正常和突变的DNA 将会得到不同的杂交图谱，经过共聚集显微镜分别检测两种DNA分子产生的荧光信号，即可确定是否存在突变，该方法快速简单、片动化程度高，具有很大的发展潜力，将在基因突变检测中心发挥非常重要的作用。
连接酶链反应
（ligase chain reaction,LCR）
与其他核酸扩增技术比较，其最大特点为可准确区分基因序列中单个基因突变，由Landegree于1988 年首次应用于镰刀奖细胞贫血的分子诊断。LCR是以DNA 连接酶将某一DNA链的5`-磷酸与另一相邻链3`-羟基连接为基础，应用两对互补的引物，双链DNA 经加热变性后，两对引物分别与模板复性，若完全互补，则在连接酶的作用下，使相邻两引物的5`-磷酸与3`-羟基形成磷酸二酯二酯键而连接，前一次的连接产物又作为下一次循环反应的模板，如果配对的碱基存在突变则不能连接和扩增。
LCR 产物检测最初是通过这32p 标记上游引物3`未端，经变性凝胶电泳分离后放射自显影加以鉴定，其检测敏感性达到200 个靶分子。也可设计1 个横跨两引物的检测探针， 用它与 LCR 产物进行杂交检测。近年有应用荧光素、地高辛等非核素标记方法。
Batt在1994年发展了一种更为简的方法，好微孔板夹心杂交法。由于LCR 的快速、特蛋和敏感的特性，以及能检测单个碱基突变的能力，因此被应用于肿瘤基因突变的分子诊断，并与PCR结合用以提高其敏感性。
等位基因特异性扩增法
（Allele-specific amplification,ASA）
ASA于1989 年建立，是PCR 技术应用的发展，也称扩增阻碍突变系统（amplification refractory mutationsystem,ARMS）、等位基因特性 PCR（allele-specific PCR,ASPCR）等，用于对已知突变基因进行检测。该法通过设计两个5`端引物，一个与正常DNA 互补，一个与突变DNA 互补，对于纯合性突变，分别加入这两种引物及3`端引物进行两个平行PCR，吸有与突变DNA 完互补的引物才可延伸并得到PCR 扩增产物。如果错配位于引物的3`端则导致PCR 不能延伸，则称为ARMS。ARMS 和ASPCR 借鉴多重PCR 原理，可在同一系统中同时检测两种或多种等位基因突变位点。
ASA 法的检出率依赖于反应条件的优化和可能发生的引物与靶DNA 有氏配时错配延伸，特别是当错配碱基为G：T 时，这时可通过调整实验条件如引物靶DNA，Taq DNA 聚合酶的浓度等来得高瓜在特异性。在反应体系中加入甲酰胺也可减少非特异性扩增。还可通过在引物3`端的第二个碱基引入一个错配碱基，使之与模板之间形成双重错配以阻止错误延伸。
RNA 酶A切割法
（RNase A cleavage）
在一定条件下，氨基源双链核酸分子RNA：RNA或RNA：DNA 中的错配碱基可被RNaseA切割，切割产物可通过变性凝胶电泳分离。当RNA 探针上错配的碱基为嘌呤时，RNaseA 在错配处的切割效率很低，甚至不切割，而当错配碱基为嘧啶时，则其切割效率较高。故如果仅分析被检DNA 的一个条链，突变检出率只有30％，如同时分析正义和反义二条链，检出率可达70％。该法需要制备RNA 探针，增加了操作的复杂性，但可用于1-2kb 的大片段进行检测，并能确定突变位点。于这些优越性，它仍被作为一种经典方法用于对未知突变进行分析。
染色体原位杂交
（In situ hybridization of chromosome）
染色体发现距今已有150 多年的历史，染色体检测被广泛用于动、植物及人类的细胞遗传学研究，随着染色体分技术和分子生物学技术的发展。染色体研究范围也不断扩大，特别是用于肿瘤分子诊断。肿瘤细胞的染色体变化是一非常普遍的现象，可分为原发和继发两类。在肿瘤形成的生物学基础方面，原发性的染色体变化与引起肿瘤的直接原因有关，肿瘤细胞中可以发现各种形式的染色体畸变，如缺失、重复、易位、重排、单体断裂及核内复制等；继发性变化主要是肿瘤细胞核型的改变。染色体的检测对于肿瘤的诊断、鉴别诊断、生物学行为判别等方面都重要意义。染色体的检测方法进展很快，检测的精确率也不断提高，这里主要介绍荧光原位杂交和PRINS 法。
荧光原位杂交技术（fluorescent in situ hybridiaation,FISH）创建于1986 年。1969 年Gall 和Pardue 首先应用核素标记核苷酸制备探针，通过放射自显影检测杂交信号。应用核素标记的探针其敏感性可以检测到中期染色体上几百个碱基的单拷贝靶核苷酸序列，敏感性虽高，但定位不够精确。FISH 具有探针稳定、操作安全，可快速、多色显示多个不同探针的杂交信号等优点。
FISH 的灵敏感与探针标记方法和检测仪器性能有关，探针标记时掺入的修饰核苷酸比例直接影响杂交信号强度。FISH 探针一般采用随机引物法或切口翻译法，如将PCR 技术引入FISH 探针标记，可使其灵敏度提高到0.25kb。应用慢扫描CCD 配合影像处理理软件，增强信噪比，有利于检测微弱信号，如应用TSA 系统（tyramide signalamplification）能将杂交信号再放大1000 倍，可用于单拷贝基因的定位。
FISH 分辨率大约为1-3Mb,如果应用强变性剂处理染色体，让DNA 分子从蛋白质中分离出来，使双DNA 完全伸展并粘附在玻片上，经引处理后，分辨率可达1-2kb。还可采用对分裂中期染色体进行显微解剖（microdissect）法以提高分辨率。FISH 的另一个特点是可以联合庆用地高辛、生物素等多种标记系统， 在一次杂交中可检测多种探针在染色体上的位置及探针间的相互关系，即多色 FISH或多靶FISH。FISH 技术已被广泛应用于肿瘤研究中的基因扩增、易位重排及缺失等的检测，在肿瘤诊断和鉴别诊断、预后和治疗监控等方面都有重要意义。
Klch 等于1989年发明了染色体上寡核苷酸引物原位DNA合成技术（oligonucleotide primed in situ DNA synthesis,PRINS）,并成功地用于染色体特异α卫星DNA 标记。其基本原理是用非标记的寡核苷酸引物同染色体上靶序列特异性地杂交，在DNA 聚合酶作用下，当引物延伸时，掺入标记的核革酸可直接或间接地检量标记位点。PRINS 技术的优点是不需克隆基因作探针，且由于杂交反应在前，标记在后，故非特异怀背景低。缺点是信号弱，灵敏度低，为克服这一制眯，Terkelsen 等建立了重复引物原位标记技术（repeated PRINS）,重复进行PRINS 反应，使信号号强度明显提高。基于FISH 的原理，发展了多色原位经物标记（multicolor PRINS）,可测定二个以上靶序列在DNA 分子上的相互的位置， 且特异性比 FISH 还高。
DNA 序列分析
（DNA sequencing）
应用各种突变检测技术检测到的基因突变，最后都需用序列分析才能确定突变类型及突变位置，其效率可以达到100％。现在的测序方法已与经典的方法有了很大的不同，其基本原理虽仍是双脱氧终止法，但自动化程度大为提高，操作更简便，测序时间也大大缩短。随着PCR 技术与测序联合使用，不需经过M13亚克隆步骤，故称为直接测序法（direct sequencing,DS ）。
DS 法测序的模板主主要来源于PCR，应用不对称 PCR（asymmetric PCR）和基因组扩增转录同步测序法（genomic amplification with transcript sequencing,GAWTS）等，使单链产物大大增加。近年来，PCR 循环测序法的建立，使模板扩增与同步进行，引物用四种不同前颜色的荧光标记，使每个样品的四个测序反应可在一个反应管和一个泳道内进行，大大提高了测邓的自动化程度。目前PE 公司推同出的DNA 自动测序仪已发展到96 泳道，并仍在不断改进。这些高度自动化的测序方法是经较理想的基因突变分析技术，但其昂贵的费用其使用范围，所以对一些小样本或为了某些特定目的的样本分析，仍进行经典的手工测序。
突变基因的检测方法多种多样，特别是PCR 技术诞生后，许多检测技术都是在PCR 基础上衍生的。由于PCR 扩增南非要的模板量少，使对肿瘤的突变分析可以精确到单细胞，如霍奇金病的R-S 细胞的单细胞基因突变分析。另外，应用显微解剖法（microdissection）可在组织切片上较精确地挑选需检测的靶点，其优点是可克服肿瘤组只中间质或癌周组织的混杂，提高准确性。
除上述介绍的方法外，还有多种方法也用于基因突变的分子检测，如对未知突变基因进行分析的酶促切割错配法（enzyme mismatc cleavage,EMC）、切割片段长度多态性（cleavagefragment length polymor phism,CEFLP）、双脱氧指纹图谱法（dideoxy finger printing,ddF）、错配接合蛋白质截短测试法（protein truncation test,PTT）等。对已知突变基因进行分析 的有引物延伸法（primer extension,PEX）、寡核苷酸链接检测法 （oligonucleotide ligation assay,OLA ）、 毛 细 管 电 泳 法 （capillaryelectrophoresis,CE）等方法。