敏感性、特异性(sensitivity and specificity)| 假阳性、假阴性 | FDR | 第一类错误、第二类错误 | ROC | AUC...

这些概念确实很难记忆,长时间不用很容易忘记。此文可以帮你快速回忆起这些概念,同时不涉及任何绕口的专业术语。

1. 记住基本框架,金标准和预测结果,没有这两个概念就没有敏感性和特异性了。以上指标都是用于衡量我们(预测)方法的效果的。考虑两个极端的方面,一、我的诊断/预测方法里的阳性包含了所有的阳性(金标准)个体,想实现这个很简单,就是任何一个人来看病我都说你得了艾滋病,这会带来什么结果呢?正面的就是所有的艾滋病个体我都可以给你判断出来,负面的呢?就是同时一大堆正常人给误判为艾滋病了;二、我的诊断/预测方法的阴性包含了所有的阴性(金标准)个体,一个极端的诊断方法就是任何一个人来看病我都说你没有艾滋病,这回漏掉了很多的阳性个体。当然大部分的诊断和预测方法都不会这么极端,核心意思就是我们必须同时考虑我们方法在阳性和阴性(犯第一类错误和第二类错误)两方面的综合表现

2. 画表是你看到这几个指标的第一反应,横轴是金标准的阳性和阴性纵轴是方法的阳性和阴性,我们预测的任何一个个体都会落到以下四个象限中的一个:

看图说话

真阳性:左上格,金标准和预测都为真;

真阴性:右下格,金标准和预测都为假;

假阳性:右上格,就是我们的预测结果是假的阳性(预测出来的阳性其实是金标准的阴性);

假阴性:左下格,就是我们的预测结果是假的阴性(预测出来的阴性其实是金标准的阳性);

敏感性sensitivity:顾名思义,就是我们的方法对阳性的敏感度,换句话说就是我给你一堆金标准的阳性结果,你能判断出多少来。就像缉毒犬一样,给你一堆含毒品的行李箱,你能闻出多少出来。这个值命名为敏感性还是很形象的。

特异性specificity:顾名思义,就是你的方法能指定地判断出阴性的能力,我给你一堆金标准的阴性结果,你会不会误判出一些阳性的结果。这个命名还是欠缺形象性,叫准阴性更贴切。

FDR:常用于多重检验下的p-value矫正;伪发现率,其意义为是 错误拒绝(拒绝真的(原)假设)的个数占所有被拒绝的原假设个数的比例的期望值。就是我的所有预测阳性中有多少是误判的假阳性。以缉毒犬为例,我的狗闻出了一堆箱子,里面有多少是不含毒品的。在差异基因检测中,使用FDR就是用于控制假阳性的比率(通常为0.05),是不是又把所有知识串起来了。

第一类错误、第二类错误:显然我们的方法里有且仅有两类错误,通常我们先考虑我们预测的阳性结果,里面有多少错误(其实是金标准的阴性),这些错误就是第一类错误,也就是上面的假阳性。在考虑我们预测的阴性结果,里面有多少是假阴性,也就是有多少第二类错误。

False positive rate (FPR):假阳性率,给你一堆金标准的阴性,有多少是假的阴性,等于1-specificity,1-准阴性不就是假阴性吗。

Confusion matrix混淆矩阵 / Contingency table列联表 (这个表的两种名称)

敏感性、特异性(sensitivity and specificity)| 假阳性、假阴性 | FDR | 第一类错误、第二类错误 | ROC | AUC..._第1张图片

基于sensitivity和specificity衍生出来的两个概念:只能用于二分类模型的评价

怎么全面地评价一个二分类模型的好坏,模型的其他指标都依赖一个threshold,单一的threshold是有偏的。

ROC:receiver operating characteristic,每个分类器作出的预测呢,都是基于一个probability score的。一般默认的threshold呢都是0.5,如果probability>0.5,那么这个sample被模型分成正例了哈,反之则是反例。ROC曲线是一系列threshold(比如逻辑斯蒂分类问题,取多少阈值来划分类别)下的(FPR,TPR)数值点的连线。不同阈值下模型的sensitivity和specificity不同。

AUC:areas-under-the-curve,曲线下的面积(AUC)越大,或者说曲线更接近左上角(true positive rate=1, false positive rate=0)。AUC的意义:分别随机从正负样本集中抽取一个正样本,一个负样本,正样本的预测值大于负样本的概率。Wilcoxon-Mann-Witney Test。

参考:如何理解机器学习和统计中的AUC?

  • (0,0):TP=0,FP=0,可以发现该分类器预测所有的样本都为负样本(Negative)
  • (1,1):TN=0,FN=0,可以发现该分类器预测所有的样本都为正样本(Positive)
  • (0,1):FP=0,FN=0,它将所有的样本都正确分类
  • (1,0):TP=0,TN=0,它将所有的样本都错误分类

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继续深入:

精确度Precision:很容易与敏感性搞混,分子是一样的,但分母不同,精确度的分母是我们方法预测出来的阳性,敏感性是金标准的阳性。精确度表示我们预测了一堆阳性结果,里面有多少是靠谱的。

准确度Accuracy:和Precision中文意思是一样的,Precision指的是测量结果的一致性。Accuracy指的是测量结果和真实结果的接近程度。

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Recall:TPR,真阳性率,和sensitivity一个东西。

F1 score:F1-score(均衡平均数)是综合考虑了模型查准率和查全率的计算结果,取值更偏向于取值较小的那个指标。F1-score越大自然说明模型质量更高。但是还要考虑模型的泛化能力,F1-score过高但不能造成过拟合,影响模型的泛化能力。 

 


以下是我曾经的一个项目,不感兴趣的可以不看。

终于要用到这个玩意了,很激动,主要统计假阴假阳性率。

我的任务:

1. 评估Pacbio MHC variation calling 结果(CCS/non-CCS)与Hiseq数据结果的一致性。
2. 分别在不同深度梯度的区域完成以上评估,推断PB MHC做variation calling的最低深度。

这里要将一个位点分为SNP、REF 和 LowQual,然后只去 SNP 和 REF 进行统计。

#!/usr/bin/env python
# Author: LI ZHIXIN

import sys
import pysam
from collections import OrderedDict

def classify_DP(depth):
    if depth > 101:
        return 21
    return ((depth-1)//5+1)

def parse_rec(rec):
    sample = list(rec.samples)[0]
    # filter the Invalid line
    if not ('GQ' or 'GT' or 'DP') in rec.samples[sample].keys() or len(rec.alleles) <= 1:
        # continue
        return 1, "LowQual", rec.pos
    # filter the LowQual
    if rec.samples[sample]['GQ'] < 30:
        return rec.samples[sample]['DP'], "LowQual", rec.pos
    # filter the indel
    flag = 0
    for one in rec.alleles:
        if len(one) != len(rec.ref):
            flag = 1
    if flag == 1:
        return rec.samples[sample]['DP'], "LowQual", rec.pos
    if rec.samples[sample]['GT'] != (0, 0): # rec.qual > 30
        # variation_dict[rec.pos] = ["snp", rec.alleles]
        return rec.samples[sample]['DP'], "snp", rec.pos  
    elif rec.samples[sample]['GT'] == (0, 0):
        # variation_dict[rec.pos] = ["ref", rec.alleles]
        return rec.samples[sample]['DP'], "ref", rec.pos

def read_gvcf(gvcf_file_path):
    variation_dict = OrderedDict()
    for i in range(1,22):
        variation_dict[i] = {}
        for j in ('LowQual', 'snp', 'ref'):
            variation_dict[i][j] = []
    # pos_list = []
    gvcf_file = pysam.VariantFile(gvcf_file_path)
    for rec in gvcf_file.fetch('chr6',28477796,33448354):
        DP, pos_type, pos = parse_rec(rec)
        if DP < 1 or DP > 20:
            continue
        # DP = classify_DP(DP)
        variation_dict[DP][pos_type].append(pos)
        # print(pos, DP, pos_type)
    gvcf_file.close()
    # return variation_dict, pos_list
    return variation_dict

def read_hiseq_gvcf(gvcf_file_path):
    variation_dict = OrderedDict()
    # for i in range(1,22):
    # variation_dict[i] = {}
    for j in ('LowQual', 'snp', 'ref'):
        variation_dict[j] = []
    # pos_list = []
    gvcf_file = pysam.VariantFile(gvcf_file_path)
    for rec in gvcf_file.fetch('chr6',28477796,33448354):
        DP, pos_type, pos = parse_rec(rec)
        DP = classify_DP(DP)
        variation_dict[pos_type].append(pos)
        # print(pos, DP, pos_type)
    gvcf_file.close()
    # return variation_dict, pos_list
    return variation_dict

def show_dict_diff_DP(Hiseq_unified_variation_dict, PB_non_CCS_variation_dict, outf, outf2):
    for DP in range(1,21):
        Hiseq_snp = set(Hiseq_unified_variation_dict['snp'])
        Hiseq_ref = set(Hiseq_unified_variation_dict['ref'])
        Hiseq_lowqual = set(Hiseq_unified_variation_dict['LowQual'])
        PB_snp = PB_non_CCS_variation_dict[DP]['snp']
        PB_ref = PB_non_CCS_variation_dict[DP]['ref']
        PB_lowqual = PB_non_CCS_variation_dict[DP]['LowQual']
        total = set(PB_snp + PB_ref + PB_lowqual)
        Hiseq_snp = total & Hiseq_snp
        Hiseq_ref = total & Hiseq_ref
        Hiseq_lowqual = total & Hiseq_lowqual
        PB_snp = set(PB_snp)
        PB_ref = set(PB_ref)
        PB_lowqual = set(PB_lowqual)
        a = len(Hiseq_snp & PB_snp)
        b = len(Hiseq_ref & PB_snp)
        c = len(Hiseq_lowqual & PB_snp)
        d = len(Hiseq_snp & PB_ref)
        e = len(Hiseq_ref & PB_ref)
        f = len(Hiseq_lowqual & PB_ref)
        g = len(Hiseq_snp & PB_lowqual)
        h = len(Hiseq_ref & PB_lowqual)
        i = len(Hiseq_lowqual & PB_lowqual)
        Low_total = (g+h+i)/(a+b+c+d+e+f+g+h+i)
        if (a+b) == 0:
            PPV = "NA"
        else:
            PPV = a/(a+b)
            PPV = "%.4f"%(PPV)
        if (a+d) == 0:
            TPR = "NA"
        else:
            TPR = a/(a+d)
            TPR = "%.4f"%(TPR)
        print(str(DP)+" :\n", a,b,c,"\n",d,e,f,"\n",g,h,i,"\n", file=outf2, sep='\t', end='\n')
        print(DP, TPR, PPV, "%.4f"%Low_total, file=outf, sep='\t', end='\n')

with open("./depth_stat.txt", "w") as outf:
    print("Depth", "TPR", "PPV", "Low_total", file=outf, sep='\t', end='\n')
    outf2 = open("raw.txt", "w")
    Hiseq_unified_variation_dict = read_hiseq_gvcf("./hiseq_call_gvcf/MHC_Hiseq.unified.gvcf.gz")
    PB_non_CCS_variation_dict = read_gvcf("./non_CCS_PB_call_gvcf/MHC_non_CCS.unified.gvcf.gz")
    show_dict_diff_DP(Hiseq_unified_variation_dict, PB_non_CCS_variation_dict, outf, outf2)
    outf2

  

又碰到一个高级python语法:在双层循环中如何退出外层循环? 我用了一个手动的flag,有其他好方法吗?

如何统计下机数据的覆盖度和深度?当然要比对之后才能统计,而且还要对比对做一些处理。

在计算一个位点是否是SNP、indel、Ref时,不仅要考虑ref、alts、qual、GQ,而且必须要把GT、DP考虑在内,所以说还是比较复杂的。

 

最后如何分析第二个问题,call variation的最低深度?

统计不同深度下的假阴假阳性率,看在什么深度下其达到饱和。

 

转载于:https://www.cnblogs.com/leezx/p/6105212.html

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