GSVA + limma进行差异通路分析

一般我们做GSEA都是先进行差异基因分析,然后取差异倍数排序结果进行GSEA。但如果你没有条件进行差异基因分析也可以进行GSEA,这就是ssGSEA(single sample GSEA, 单样品GSEA)对每个样品进行GSEA。R包GSVA(Gene Set Variation Analysis)可以用来进行ssGSEA。GSVA将 表达矩阵转换成通路富集分数(ES)矩阵 ,再借用limma包的 lmFit 分析得到差异通路。
先导入需要的包和检查一下表达矩阵,我例子表达矩阵是6个样品的RNA-seq数据(read count)。其中 GSEABase 包用于读取gmt格式基因集文件,本文用从MSigDB下载的KEGG基因集。

library(GSVA)
library(GSEABase)
library(limma)

> head(readCount)
    A1   A2   A3  B1   B2   B3
1  807 1102 1252 237  689  485
2   50   93   28  38 2104 1083
9  292  839  319 301  192  327
10  26    8    0   0    4    0
12   3  214   41   0    1    2
13   5    0    0   9  131   75
> dim(readCount)
[1] 20292     6

因为基因集使用ENTREZID标志基因,我的表达矩阵基因名(即行名)也转换成ENTREZID,这点要保持一致。然后读入KEGG基因集,用GSVA将表达矩阵转换成通路矩阵。此时已经获得单样本的通路富集结果。这里 kcdf 参数设为"Poisson"是因为使用read count数据,如果是使用 log 后的CPM, RPKM, TPM等数据就用默认值"Gaussian"。参数 parrallel.sz 设置并行线程数,因为每个基因集的计算是独立的。

> keggSet <- getGmt("/datapool/pengguoyu/Database/MSigDB/c2.cp.kegg.v7.0.entrez.gmt")
> keggEs <- gsva(expr=as.matrix(readCount), gset.idx.list=keggSet, kcdf="Poisson", parallel.sz=4)
> head(keggEs, n=3)
                                        A1        A2            A3         B1
KEGG_GLYCOLYSIS_GLUCONEOGENESIS -0.1861730 0.2241277  0.0004014829 -0.3203273
KEGG_CITRATE_CYCLE_TCA_CYCLE    -0.5081698 0.5308383  0.1455315128 -0.4934121
KEGG_PENTOSE_PHOSPHATE_PATHWAY  -0.2435699 0.3432502 -0.2706873733 -0.1581674
                                         B2          B3
KEGG_GLYCOLYSIS_GLUCONEOGENESIS -0.10393707  0.02900289
KEGG_CITRATE_CYCLE_TCA_CYCLE    -0.25016781  0.02487492
KEGG_PENTOSE_PHOSPHATE_PATHWAY   0.07934649 -0.28966916

> dim(keggEs)
[1] 186   6

准备用limma的 lmFit 设定组间比较为B组比A组。

> grouP <- c(rep("A", 3), rep("B", 3)) %>% as.factor()
> desigN <- model.matrix(~ grouP + 0)
> rownames(desigN) <- c("A1", "A2", "A3", "B1", "B2", "B3")
> desigN
   grouPA grouPB
A1      1      0
A2      1      0
A3      1      0
B1      0      1
B2      0      1
B3      0      1
attr(,"assign")
[1] 1 1
attr(,"contrasts")
attr(,"contrasts")$grouP
[1] "contr.treatment"
# 用desigN的列名,设定B组比A组
> comparE <- makeContrasts(grouPB - grouPA, levels=desigN)

使用limma取得差异通路结果,这里KEGG一共才186通路,所以 number 参数设200就可以取得所有结果。

> fiT <- lmFit(keggEs, desigN)
> fiT2 <- contrasts.fit(fiT, comparE)
> fiT3 <- eBayes(fiT2)
> keggDiff <- topTable(fiT3, coef=1, number=200)
> head(keggDiff, n=3)
                                                             logFC      AveExpr
KEGG_GLYCOSAMINOGLYCAN_DEGRADATION                      -0.7343229 -0.006312659
KEGG_FOCAL_ADHESION                                     -0.6204141 -0.056091519
KEGG_GLYCOSAMINOGLYCAN_BIOSYNTHESIS_CHONDROITIN_SULFATE -0.8470823 -0.039176682
                                                                t      P.Value
KEGG_GLYCOSAMINOGLYCAN_DEGRADATION                      -6.643722 8.986989e-05
KEGG_FOCAL_ADHESION                                     -5.918378 2.147451e-04
KEGG_GLYCOSAMINOGLYCAN_BIOSYNTHESIS_CHONDROITIN_SULFATE -5.795434 2.505992e-04
                                                         adj.P.Val         B
KEGG_GLYCOSAMINOGLYCAN_DEGRADATION                      0.01415655 1.8704201
KEGG_FOCAL_ADHESION                                     0.01415655 1.0675346
KEGG_GLYCOSAMINOGLYCAN_BIOSYNTHESIS_CHONDROITIN_SULFATE 0.01415655 0.9232913

这个GSVA还支持 ssGSEA, zscore, plage 三种计算基因集得分方法。

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