宏基因组实战8. 分箱宏基因组binning, MqaxBin, MetaBin, VizBin

前情提要

如果您在学习本教程中存在困难，可能因为缺少背景知识，建议先阅读本系统前期文章

• 宏基因组分析理论教程
• 微生物组入门圣经+宏基因组分析实操课程
• 1背景知识-Shell入门与本地blast实战
• 2数据质控fastqc, Trimmomatic, MultiQC, khmer
• 3组装拼接MEGAHIT和评估quast
• 4基因注释Prokka
• 5基于Kmer比较数据集sourmash
• 5基于Kmer比较数据集sourmash
• 6不比对快速估计基因丰度Salmon
• 7bwa序列比对, samtools查看, bedtools丰度统计

宏基因组binning简介

宏基因组研究中，你想不想知道那些序列来自那些菌，想不想拼出末知菌的基因组呢？

其实这些可以有，很多高水平文章中都有，这个过程就叫Binning(我习惯将其翻译为分箱)，是宏基因组分析提升档次的关键步骤。

想了解Bining的背景知识，请阅读《一文读懂宏基因组binning》。想全面了解哪些软件可以Binning，请看《精选30余款宏基因组分析软件》。想知道更全面的Bin软件及评估，可以阅读本月刚发表的Nature Method(http://dx.doi.org/10.1038/nmeth.4458)，或阅读之前写的导读《Nature Method: 史上最权威宏基因组软件评估—人工重组宏基因组基准数据集》，其中有9款Bin软件的简介和比较。

分箱宏基因组

https://2017-cicese-metagenomics.readthedocs.io/en/latest/binning.html

宏基因组拼接以后，接下来常用的分析就是分箱(binning)，即将组装的叠连群(contigs)进行分组或分箱，这些组内可能来自相近的分类学单元。有许多工具可用于Binning，详细介绍和评估见Nature Method: Critical Assessment of Metagenome Interpretation—a benchmark of metagenomics software。本文只介绍两款易用且高引的软件 ——MaxBin (引用105次) 和MetaBAT (引用123次)。为了进行分箱，我们先要使用bwa比对原始序列到拼接结果，估计叠连群的相对丰度。对于分箱的结果，我们要使用VizBin进行检查。

安装分箱工具

MaxBin安装

# 进入工作目录
wd=~/test/metagenome17
cd $wd
# 下载Maxbin
curl  https://downloads.jbei.org/data/microbial_communities/MaxBin/getfile.php?MaxBin-2.2.2.tar.gz > MaxBin-2.2.2.tar.gz
# 解压并安装
tar xzvf MaxBin-2.2.2.tar.gz
cd MaxBin-2.2.2/src
make

cd $wd
git clone https://github.com/COL-IU/FragGeneScan.git
cd FragGeneScan
make clean
make fgs

cd $wd
git clone https://github.com/loneknightpy/idba.git
cd idba
./build.sh
sudo apt-get install bowtie2 hmmer
export PATH=$PATH:$wd/idba/bin
export PATH=$PATH:$wd/FragGeneScan
export PATH=$PATH:$wd/MaxBin-2.2.2

MetaBAT安装

cd $wd
# 此处如下载不成功，自己下载吧。百度云链接已经被和谐了
curl -L https://bitbucket.org/berkeleylab/metabat/downloads/metabat-static-binary-linux-x64_v0.32.4.tar.gz > metabatv0.32.4.tar.gz
tar xvf metabatv0.32.4.tar.gz

现在开始分箱(Binners)的时间到，注意MaxBin运行时是非常耗时的。本文为了演示，采用牺牲质量而换取时间的方式来让大家演示。

1. 我们只用原文6个数据集中的2，而实际上Bin是数据越多越好的。我们取子集只是为了加速演示。
2. 降低迭代次数，将默认的50次改为5次，将降低结果质量，但显著减少运行时间。详见官方帮助

第一种Bin方法 - MaxBin

Maxbin考虑每个contig的序列覆盖度和四碱基频率，以记录每个bin的标志基因数量.

将count文件传递给MaxBin

mkdir binning
cd binning
mkdir maxbin
cd maxbin
ls $wd/mapping/*coverage.tab > abundance.list # 需要完成第7节：比对

开始bin

run_MaxBin.pl -contig $wd/mapping/subset_assembly.fa -abund_list abundance.list -max_iteration 5 -out mbin

此步会产生一系列文件。看一下文件，会发现产生一系统*.fasta的按数字排列的文件，这些就是预测的基因组bins。
先查看less mbin.summary的总体情况

Bin name        Completeness    Genome size     GC content
mbin.001.fasta  15.0%   228392  31.0
mbin.002.fasta  15.9%   404710  33.3
mbin.003.fasta  64.5%   1252476 55.1
mbin.004.fasta  81.3%   1718948 53.5
mbin.005.fasta  82.2%   2737044 37.0
mbin.006.fasta  69.2%   2106585 50.3
mbin.007.fasta  87.9%   1932782 46.1

将所有的bin文件链接起来，并将文件名作为序列名

for file in mbin.*.fasta
do
    num=${file//[!0-9]/}
    sed -e "/^>/ s/$/ ${num}/" mbin.$num.fasta >> maxbin_binned.concat.fasta
done

我们还要生成一个用于可视化的列表

echo label > maxbin_annotation.list
grep ">" maxbin_binned.concat.fasta |cut -f2 -d ' '>> maxbin_annotation.list

第二种方法 - MetaBAT

MetaBAT分箱考虑三点：测序reads覆盖度(read coverage)、覆盖度变异(coverage variance)、和四碱基频率(tetranucleotide frequencies)。

cd $wd/binning
mkdir metabat
cd metabat
ln -fs $wd/mapping/*abundtrim*sorted.bam .
# 统计contig覆盖度
$wd/metabat/jgi_summarize_bam_contig_depths --outputDepth depth_var.txt *bam

运行MetaBAT script

$wd/metabat/metabat -i $wd/mapping/subset_assembly.fa -a depth_var.txt --verysensitive -o metabat -v > log.txt

合并所有的bin结果

for file in metabat.*.fa
  do
    num=${file//[!0-9]/}
   sed -e "/^>/ s/$/ ${num}/" metabat.$num.fa >> metabat_binned.concat.fasta
done

生成bin编号注释文件

echo label > metabat_annotation.list
grep ">" metabat_binned.concat.fasta |cut -f2 -d ' '>> metabat_annotation.list

Bin的可视化

我们现在有MaxBin, MetaBin两种结果，首要先做的是质量评估。最常用的工具是CheckM。但是由于时间有限，今天只介绍VizBin使用。

安装VizBin

cd $wd
sudo apt-get install libatlas3-base libopenblas-base default-jre
curl -L https://github.com/claczny/VizBin/blob/master/VizBin-dist.jar?raw=true > VizBin-dist.jar

java -jar VizBin-dist.jar

想要显示图型界面，需要Xmanager安装成功。也可以在Windows上运行jar程序。

按选择(choose)，菜单中选择$wd/mapping/binning/maxbin_binned.concat.fasta,可以直接点开始(Start)。

看到了什么，具体可以阅读VizBin原文。

上传注释文件，如下图

同样分析metaBAT的结果。

比较两种方法：
- 分别有多少bins?
- 有多少个明显的bins?

Reference

1. Maxbin: https://microbiomejournal.biomedcentral.com/articles/10.1186/2049-2618-2-26
2. 官方帮助 https://downloads.jbei.org/data/microbial_communities/MaxBin/README.txt

猜你喜欢

• 一文读懂：1微生物组 2进化树 3预测群落功能
• 热文：1图表规范 2DNA提取 3 实验vs分析
• 必备技能：1提问 2搜索 3Endnote
• 文献阅读 1热心肠 2SemanticScholar 3geenmedical
• 扩增子分析：1图表解读 2分析流程 3统计绘图 4群落功能 5进化树
• 科研团队经验：1云笔记 2云协作 3公众号
• 系列教程：1Biostar 2微生物组 3宏基因组
• 生物科普 1肠道细菌 2生命大跃进 3细胞的暗战 4人体奥秘

写在后面

为鼓励读者交流、快速解决科研困难，我们建立了“宏基因组”专业讨论群，目前己有国内外七十多位PI，七百多名一线科研人员加入。参与讨论，获得专业指导、问题解答，欢迎分享此文至朋友圈，并扫码加主编好友带你入群，务必备注“姓名-单位-研究方向-职务”。技术问题寻求帮助，首先阅读《如何优雅的提问》学习解决问题思路，仍末解决群内讨论，问题不私聊，帮助同行。

学习16S扩增子、宏基因组科研思路和分析实战，关注“宏基因组”

点击阅读原文，跳转最新文章目录阅读
https://mp.weixin.qq.com/s/5jQspEvH5_4Xmart22gjMA